质粒DNA的提取过程中,应注意哪些操作,为什么?

从未听说2mol/L的NaCl溶液可以保持DNA稳定,只是说DNA在这个盐浓度下溶解度最大,可以除去一些杂质,但不能防止DNA降解.大分子DNA主要是由于过长,容易断裂形成小片段.所以在提取的时候操作

非本人原创,转载自网络.认真看.质粒提取需要注意的提到了.溶液I,50mM葡萄糖/25mMTris-Cl/10mMEDTA,pH8.0；溶液II,0.2NNaOH/1%SDS；溶液III,3M醋酸钾/

首先加入溶液1,：改变细胞膜的通透性.加入溶液2：使细胞裂解,释放出质粒DNA和染色体DNA,在碱性条件下,破坏碱基配对,使这两种DNA都变性.加入溶液3：使DNA分子复性.此时,线状染色体DNA的两

首先要知道,质粒是共价,闭合,环状的DNA（cccDNA）.以常用的碱裂解法为例：当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时,蛋白质与DNA发生变性,当加入中和液后,质粒的cccDNA分子能够迅速复性,呈溶

用酚氯仿再次抽提.若对去除基因组DNA有要求,那么用核酸外切酶处理.再问：能不能再详细点？？？谢谢

质粒DNA提取一般用沸水浴法和碱裂解法,现在一般都采用碱裂解法,并有试剂盒可用,它主要是将细胞内的环状质粒提取出来,一般需要用SDS裂解,RNA酶降解,然后过柱,再进行洗脱.过程比较简单.而基因组DN

尽量主要是为了灭火dna酶

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汗,没听说过氨苄青霉素可以破坏细胞壁的,这样子的话就不需要碱裂解了,氨苄青霉素肯定是在扩增菌体的时候加入培养基的,不会对提取本身造成影响,但是可以阻止杂菌生长,增加目的质粒的拷贝数（前提是,质粒是氨苄

我的教训是加酒精时要慢一点,过滤时要多过滤几次,不然会剩余大量蛋白质,影响结果.

据我自己的经验,这种情况往往是由于操作不当引起,可能有如下原因：1,菌体量可能过大,裂解不充分,或裂解液与中和液比例不适当；（调整菌液量或缓冲液量）2,混合时过于剧烈,可能会带来基因组DNA片段的污染

酚:氯仿:的目的是沉淀蛋白质原理如下：酞与氯仿是非极性分子,水是极性分子,当蛋白水溶液与酚或氯仿混合时,蛋白质分子之间的水分子就被酚或氯仿挤去,使蛋白失去水合状态而变性过离心,变性蛋白质的密度比水的密

碱性条件下,染色体DNA双螺旋结构解开而变性,质粒DNA的氢键断裂但两条互补链彼此缠绕.恢复中性时,染色体DNA难以复性,质粒DNA分子很快复性,离心时染色体DNA与细胞碎片一起被沉淀出来,而质粒DN

1.提取过程应尽量保持低温.2.提取质粒DNA过程中除去蛋白很重要,采用酚/氯仿去除蛋白效果较单独用酚或氯仿好,要将蛋白尽量除干净需多次抽提.3.沉淀DNA通常使用冰乙醇,在低温条件下放置时间稍长可使

叶绿体中色素提取的原理是：由于光合色素位于叶绿体中的囊状结构上,要把它提取出来必须破坏叶表皮、细胞壁和细胞膜、叶绿体的双层膜,所以要剪碎后加二氧化硅研磨,以便使色素充分被提取.又因为叶绿体的色素不溶于

提取的时候饱和酚,氯仿需要定量,这些可以去蛋白.去除RNA污染,RNA酶活性,定量.凝胶电泳,试剂最好是即用型的,因为有些东西放久了会长菌.然后是染料的热稳定性和灵敏度.

基因组DNA可以提取,质粒DNA也可以提取,要看你需要的目的基因是位于基因组上还是质粒上,要哪个部分就提取哪个部分.在基因工程中,质粒是一个非常理想的载体,大部分的目的基因会先导入到质粒中进行扩增,所

溶液2中的主要成分是NaOH和SDS,是用来裂解细胞的.因为NaOH遇到二氧化碳容易反应生成碳酸氢钙,影响使用效果,因此要现配现用.SDS的话,低温容易产生沉淀.不过在37°C水浴一下就好.主要还是N

碱提法：一、试剂准备1.溶液Ⅰ:50mM葡萄糖,25mMTris-HCl(pH8.0),10mMEDTA(pH8.0）.1MTris-HCl(pH8.0）12.5ml,0.5MEDTA（pH8.0）1

以东盛生物的为例bufferP1：除去RNAbufferP2：裂解细胞bufferP3：沉淀DNAbufferWA、bufferWB：都是洗涤液（这两个之间有什么区别我也不清楚）TE：溶解DNA.